基因组学与医学生物学
(
网络版
), 2012
年
,
第
1
卷
,
第
3
篇
,
第
18
-
22
页
Jiyinzuxue Yu Yixue Shengwuxue (Online), 2012, Vol.1, No.3, 18
-
22
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21
合成成本和连续反应的次数,寡聚核苷酸链的长度
应适宜,过长不利于合成、过短则增加成本和反应
次数。我们经过数次重复试验发现引物长度为
55~59 bp
时,在引物合成成本和扩增效率上的性价
比是最高的。其次是引物间重叠区域的长度和选
择,现有
SOE-PCR
技术中相邻引物间的重叠区域
一般为
25~30
个碱基,我们在实验中通过综合考虑
引物的
Tm
值和重叠区的碱基序列等因素,设计的
重叠区域短至
15~16 bp
均获得了有效的扩增。
(4)
高质量的模板。由于每轮
PCR
产物作为下一
轮
PCR
反应的模板,所以
PCR
产物应进行纯化,以
免给后面的反应带来不良后果。同时在回收过程中尽
量避免
EB
及紫外对模板造成的损伤:如用于回收产
物的凝胶中应减少
EB
的加入量
(
低于
0.15 μg/mL)
,
另外切胶过程中应尽量减少紫外线照射时间。
获得的融合基因经测序验证与预期完全一致,
在合成过程中没有产生突变。随后我们利用生物信
息学软件对融合基因推导的氨基酸序列进行了预
测和分析,结果表明
HTPP-MDC
为阳离子多肽、结
构稳定、具有亲水性,二级结构主要由
α-
螺旋、无
规则卷曲、延伸链和
β-
转角组成,与融合前亲本肽
的二级结构基本一致,在一定程度上说明融合多肽
保持了与天然多肽类似的空间构象。
HTPP-MDC
有
望开发成新型肝靶向抗
HBV
药物,成功构建融合多
肽并对其分子特征进行了预测和分析,为
HTPP-
MDC
的功能研究和开发利用提供了物质基础和理
论依据,同时也为应用
SOE-PCR
技术快速、准确地
构建融合基因提供有益借鉴。
3
材料与方法
3.1
实验材料
Escherichia coli
(
E. coli
) DH5α
、
MDC/pMD20
-
T
质粒为本实验室保存。
pMD20
-
T
载体,
r
Taq
DNA
Polymerase
,高保真酶
PrimeSTARHSDNAPolymerase
,
DNA
分子量标准,限制性内切酶
Kpn
Ⅰ
、
Hin
d
Ⅲ购
自
TaKaRa
公司;
TIANpure Midi Plasmid Kit
和
TIANgel Midi Purification Kit
为北京
TIANGEN
公
司产品;其他化学试剂为国产或进口分析纯。
3.2
引物设计
设计
4
条寡核苷酸引物,其中
H1
、
M1
为与目
的基因同向部分的引物,
H2
、
M2
为与目的基因互
补部分的引物,
M1
和
M2
用于从
MDC/pMD 20
-
T
质粒中扩增
MDC
片段。
H1
与
H2
、
H2
与
M1
之间
分别有
16 bp
的重叠互补区。外侧上游引物
H1
中
包含
Kpn
Ⅰ
酶切位点,外侧下游引物
M2
中设计了
终止密码子和
Hin
d
Ⅲ酶切位点,各引物在目的基
因中的位置如图
6
所示。引物设计如下
(
划线部分为
酶切位点,斜体为重叠
DNA
序列部分,粗体为终
止密码子
)
:
H1: 5'-CGGGGTACCGACGACGACGACAAG
AATAGTCGTTCACTTG
-3'
;
H2: 5'-
GTAATTTCTCGTTGTC
TTCGTTATTTC
CATCATCATTTTCTC
CAAGTGAACGACTATT
-3'
;
M1: 5'-
GACAACGAGAAATTAC
GTGGATGGTTG
AAAAAAAT-3'
;
M2: 5'-CCCAAGCTT
ATTA
GTTACCCTTTAAT
GTGGCGGCA-3'
;
3.3 SOE-PCR
法构建融合基因
将整条序列分成两段
(
HM1
,
HM2
)
,首先分别
PCR
扩增出这两段序列,然后用一轮
PCR
进行拼
接,最后扩增全长目的基因序列。
HM1
的扩增:将上述合成的引物
H1
和
H2
进
行链延伸反应,扩增体系如下:
13.75 μL Sterile H
2
O
,
2.0 µL dNTP Mixture (2.5 mmol/L each)
,
5.0 µL
5×PrimeSTAR Buffer
,
2.0 μL H1 Primer (10 μM/L)
,
2.0 μL H2 Primer (10 μM/L)
,
0.25 µL PrimeSTAR
HS DNA Polymerase (2.5 units/μL)
。扩增条件为:
98
℃
10 s
,
68
℃
40 s
,循环
30
次。
HM2
的扩增:以
pMD 20
-
T/MDC
质粒为模板,
M1
和
M2
为引物进行
PCR
反应,扩增体系如下:
14.75 μLSterile H
2
O
,
2.0 µLdNTPMixture (2.5 mmol/L
each)
,
5.0 µL 5×PrimeSTAR Buffer
,
1.0 μLM1 Primer
(10 μM/L)
,
1.0 μLM2 Primer (10 μM/L)
,
1.0 μL pMD
20
-
T/MDC Plasmid
,
0.25 µL PrimeSTAR HS DNA
Polymerase (2.5 units/μL)
。扩增条件为:
98
℃
10 s
,
68
℃
40 s
,循环
30
次。
全长目的基因的拼接与扩增:第一轮以上一步
PCR
扩增获得的
HM1
和
HM2
互为模板进行链延伸
反应,扩增体系如下:
5.0 µL 5×PrimeSTAR Buffer
,
2.0 µL dNTP Mixture (2.5 mmol/L each)
,
15.75 μL
Sterile H
2
O
,
1.0 μL
HM1
,
1.0 μL
HM2
,
0.25 µL
PrimeSTAR HS DNA Polymerase (2.5 units/μL)
。
扩增条件为:
98
℃
10 s
,
68
℃
30 s
,循环
10
次。第
二轮向
PCR
管内分别加入
1.0 μL
的外引物
H1
和
M2
大量扩增。扩增条件为:
98
℃
10 s
,
68
℃
40 s
,
循环
30
次。第三轮向
PCR
管内加入
0.125 μL
的
r
Taq