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Guo et al., 2011, Rapid Acquirement of Transgenic Rice Plants Derived
from Callus of Mature Embryos Transformed by Agrobacterium Mediation, Molecular Plant Breeding (online) Vol.2 No.2 (doi: 10.5376/mpb.2011.02.0002)
1035
柱等
, 2008)
。将经过饥饿处理的愈伤组织置于农杆
菌菌液中
(OD
600
0.4)
侵染
15 min
,侵染完后倒出愈
伤组织并用干燥无菌纸吸去多余菌液。
3.6
侵染后与共培养后干燥处理
侵染后对愈伤组织进行如下处理:
A
组:不经
过干燥处理,直接进行共培养,然后进行分化培养。
B
组:侵染后进行干燥处理。干燥处理方式为:在
超净工作台内,将愈伤组织置于吸水纸上风干
20
钟。共培养时在共培养基上垫一张滤纸,再将愈伤
组织置于滤纸上
(Hamid Rashid et al., 1996)
28
℃暗
培养
3 d
。共培养后使用甘露醇溶液冲洗
4
-
5
次至清
(
甘露醇
0.1 mol/L,
内含头孢噻肟钠
Cef 300
mg/L)
。共培养后对愈伤组织进行如下处理:
C
组:
对侵染后未经干燥处理的愈伤组织进行干燥处理。
D
组:对侵染后经干燥处理的愈伤组织进行干燥处
理。干燥处理方式为:风干
20
分钟,再将愈伤组织
置于垫有
2
层吸水纸的培养皿中,光照条件下干燥
8
小时
(
每次处理
50
个愈伤组织
,
一共处理
250
,
除去
污染愈伤组织
,
只统计
200
个愈伤组织的分化率
,
愈伤分化率
(%)=
长出芽的愈伤数
/
愈伤组织总数×
100%)
3.7
愈伤组织分化及抗性植株的获得
将共培养后的愈伤组织接至分化培养基上进
行约
7 d
的分化。光照条件为
2 000 lux
13 h/d
,温
26
℃。然后进入约
14 d
的筛选分化,将获得的抗
性苗转移至生根培养基中。约
14 d
后,将根系发育
良好的再生水稻植株炼苗、移栽。
3.8
转基因水稻的
GUS
组织化学检测
具体方法参照
Jefferson
方法
(1987)
所述。
3.9
基因组
PCR
检测
提取除草剂抗性水稻植株的基因组
DNA
(TIANGEN
公司的植物基因组提取试剂盒提取
)
。根
UbiI
启动子序列,设计合成一对引物,上游引物
序列为:
5’
-
CATCTCTGTCGCTGCCTCTG
-
3’
;下
游引物序列为:
3’
-
CTGAAGTCCAGCTGCCAGAA
-
5’
PCR
反应体系为
25 µl
,上下游引物各
1.5 µl
2 µl
Template DNA
2.5 µl 10
×
EX Taq
Buffer
4 µl dNTPs
(2.5 mmol/L, Mg
2+
plus)
0.15 µl
TaKaRa EX Taq
DNA
聚合酶,
11.35 µl ddH
2
O
PCR
扩增程序为:
94
变性
2
分钟,
94
30
秒,
55
40
秒,
72
40
秒,
35
个循环;
72
℃延伸
3
分钟,
4
℃保存。用
1
%琼脂
糖凝胶电泳检测扩增产物。
3.10
统计分析
实验数据使用统计软件
SPSS 13.0
作差异显著
性分析,采用
LSD
法作多重比较分析。
作者贡献
赵德刚是项目的构思者及负责人,指导实验设计和论
文写作与修改。郭刚参与本研究实验设计、实验研究、数据
分析、论文初稿的写作和试验结果分析。余靖参与完成研究
中载体设计。试验植物材料来源于贵州省农业生物工程重点
实验室。全体作者都阅读并同意最终的文本。
致谢
本研究由科技部国际科技合作项目:基因删除技术在
转基因水稻和油菜上的应用及安全性评价
(
项目编号
:
2007DFA31260)
;科技部国家科技支撑计划项目:喀斯特山
区特有作物优异基因资源发掘与转基因安全关键技术研究
与应用
(
项目编号
: 2007BAD59B06)
;科技部国家科技支撑计
划项目:国家转基因新品种培育重大专项-安全转基因技术
研究
(
项目编号
: 2008ZX08010
-
003)
资助。
参考文献
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