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分子植物育种
(
网络版
), 2012
年
,
第
10
卷
,
第
1360
-
1368
页
Fenzi Zhiwu Yuzhong (Online), 2012, Vol.10, 1360
-
1368
http://mpb.5th.sophiapublisher.com
1365
因定点突变方法结合双向电压钳技术，发现了甜瓜
钾离子通道
MIRK
受
Na
+
抑制的氨基酸位点
(
王黎敏
等
, 2011)
。
3.3
蛋白质研究技术
酵母双杂技术是用于研究蛋白质间互作的常用
技术。利用酵母双杂技术，人们发现，毛果杨中钾离子
通道
PeKC1
、
PeKC2
均与
PeCIPK17
、
PeCIPK24
存在互作，并结合转基因技术，证明了毛果杨中也存
在着
CBL-CIPK
网络调控机制
(Zhang et al., 2010)
。
基因表达的时空特异性及蛋白的亚细胞定位
可为基因功能解释提供重要线索。胡萝卜中存在一
个与
AtKC1
高同源性的
KDC1
基因。采用烟草原
生质体定位试验发现，细胞分别表达
KDC1
或
AtKC1
时，两蛋白均定位于细胞内膜系统，但两
者分别与
AKT1
共表达后，
KDC1
和
AtKC1
均会
随着
AKT1
转移到细胞质膜上
(Naso et al., 2006)
。
4
展望
到目前为止，
Shaker
家族是研究最多、最深入
的植物钾离子通道。在离子通道研究中，新的技术
手段正在不断地应用，离子通道的特性及其表达调
控将越来越被人们了解。尽管离子通道调控网络的
研究深化了人们对植物响应逆境胁迫机制的认识，
但是钾离子通道参与细胞信号传导、保卫细胞运动、
花粉管萌发等众多生理过程的作用机制尚不清楚。
同时，如何结合分子育种手段与基因工程技术，将
钾离子通道的研究更好地应用于植物营养性状的改
良，是将来要重点解决的课题。
作者贡献
靳义荣负责相关资料的收集、整理，并完成论文初稿的
写作。宋毓峰、董连红、白岩和张良负责论文的修改及校对。
王倩和刘好宝负责论文的设计与指导。全体作者均阅读并同
意最终的文本。
致谢
本项目由中央级公益性科研院所基本科研业务费专项
(
2012ZL058
)
资助。
参考文献
Ache P., Becker D., Deeken R., Dreyer I., Weber H., Fromm J.,
Hedrich R., 2001, VFK1, a Vicia faba K
+
channel involved
in phloem unloading, Plant. J., 27(6): 571-580 http://dx.
doi.org/10.1046/j.1365-313X.2001.t01-1-01116.x PMid:
11576440
Ache P., Becker D., Ivashikina N., Dietrich P., Roelfsema R.G.,
Hedrich R., 2000, GORK, a delayed outward rectifier
expressed in guard cells of Arabidopsis thaliana, is a
K
+
-selective, K
+
-sensing ion channel, FEBS LETT, 486(2):
93-98 http://dx.doi.org/10.1016/S0014-5793(00)02248-1
Anderson J.A., Huprikar S.S., Kochian L.V., Lucas W.J., Gaber
R.F., 1992, Functional expression of a probable Arabidopsis
thaliana potassium channel in Saccharomyces cerevisiae,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 89(9): 3736-3740 http://dx.
doi. org/10.1073/pnas.89.9.3736 PMid:1570292 PMCid:
525565
Booij P.P., Roberts M.R., Vogelzang S.A., Kraayenhof R., and
De Boer A.H., 1999, 14
-
3
-
3 proteins double the number
of outward-rectifying K
+
channels available for activation
in tomato cells, Plant. J., 20(6): 673-683 http://dx.doi.
org/10. 1046/j.1365-313X.1999.00643.x PMid:10652139
Buschmann P.H., Vaidyanathan R., Gassmann W., Schroeder
J.I., 2000, Enhancement of Na
+
uptake currents, time-
dependent inward-rectifying K
+
channel currents, and K
+
channel transcripts by K
+
starvation in wheat root currents,
and K
+
channel transcripts by K
+
starvation in wheat root
cells, Plant Physiol, 122(4): 1387-1397 http://dx.doi.org/
10.1 104/pp.122.4.1387 PMid:10759535 PMCid:58974
Chérel I., Michard E., Platet N., Mouline K., Alcon C.,
Sentenac H., and Thibaud J.B., 2002, Physical and func-
tional interaction of the Arabidopsis K
+
channel AKT2
and phosphatase AtPP2CA, Plant Cell, 14(5): 1133-1146
http: //dx.doi.org/10.1105/tpc.000943 PMid:12034902
PMCid: 150612
Deeken R., Ivashikina N., Czirjak T., Philippar K., Becker D.,
Ache P., Hedrich R., 2003, Tumour development in Arabi-
dopsis thaliana involves the Shaker-like K
+
Channels
AKT1 and AKT2/3, Plant J, 34(6): 778-78 http://dx.doi.
org/10. 1046/j.1365-313X.2003.01766.x PMid:12795698
Dreyer I., Antunes S., Hoshi T., Müller-Röber B., Palme K.,
Pongs O., Reintanz B., and Hedrich R., 1997, Plant K
+
channel alpha-subunits assemble indiscriminately, Biophys.
J., 72(5): 2143-2150 http://dx.doi.org/10.1016/S0006-
3495 (97)78857-X
Dreyer I., Becker D., Bregante M., Gambale F., Lehnen M.,
Palme K., Hedrich R., 1998, Single mutations strongly
alter the K
+
-selective pore of the Kin channel KAT1,
FEEBS LETT, 430(3): 370-376 http://dx.doi.org/10.1016/
S0014- 5793(98)00694-2
Downey P., Szabo I., Ivashikina N., Negro A., Guzzo Ache P.,
Hedrich R., Terzi M., Lo Schiavo F., 2000, KDC1 a novel
carrot root hair K
+
channel: cloning, characterisation and
expression in mammalian cell, J. Biol. Chem, 275(50):
39420-39426 http://dx.doi.org/10.1074/jbc.M002962200
PMid:10970888
Dreyer I., and Uozumi N., 2011, Potassium channels in plant
cells, FEBS Journal, 278(22): 4293-4303 http://dx.doi.
org/10.1111/j.1742-4658.2011.08371.x PMid:21955642